一文讀懂:八大RNA m6A甲基化研究核心問題|易基因


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近年來,RNA m6A甲基化作為國家自然科學基金表觀遺傳學研究的熱門領域,相關研究產出呈爆炸式增長,高分文章不斷。本期,易基因通過對什么是RNA甲基化、m6A甲基化是否可逆、m6A甲基化的識別、m6A甲基化修飾的功能、m6A甲基化的主要研究方向、m6A甲基化檢測技術工具的選擇、m6A甲基化數據挖掘思路、m6A甲基化下游實驗設計等八大核心問題進行總結,讓您一問讀懂m6A甲基化。

 

 

1、什么是RNA甲基化

RNA上修飾的種類很多,包括甲基化、羥甲基化、乙酰化等。m6A是RNA上最豐富的一種修飾,平均每條轉錄本有1~3個m6A修飾。m6A存在於大多數真核生物(包括哺乳動物、昆蟲、植物和酵母)和一些病毒的mRNA中,也存在於tRNA、rRNA、小核RNA(small nuclear RNA, snRNA)以及一些長鏈非編碼RNA。m6A甲基化(N6-methyladenosine)是指RNA分子在RNA甲基化轉移酶復合體(MTC)的作用下將甲基選擇性地添加到特定腺嘌呤鹼基上的過程。

 

 

 

2、m6A甲基化是否可逆?

m6A甲基化是動態可逆的。

  • m6A的添加(Writers):通過m6A甲基轉移酶復合體,主要識別CDS和3’ UTR中的RRACH基序並進行修飾。( R = G or A;H = A,C, or U)

 

 

  • m6A的去除(Erasers):FTO與ALKBH5

 

m6A甲基轉移酶復合體的組成

 

3、m6A甲基化的識別

  • m6A的識別蛋白(Readers):m6A可以通過招募各種識別蛋白的結合,以決定RNA的命運,從而調控細胞的功能狀態。
  • 直接識別蛋白:以色氨酸口袋進行m6A識別
  • m6A結構開關(m6A structural switch):RNA獲得m6A修飾之后二級結構打開,讓識別蛋白能夠識別
  • 間接識別蛋白:通過直接結合識別蛋白,從而影響RNA的功能

 

 

4、m6A甲基化修飾的功能

m6A識別蛋白介導了m6A修飾對RNA的各種功能,m6A甲基化通過基因轉錄后調控,參與細胞分化、胚胎發育、X染色體失活、環境應激和各種疾病的發生發展。

  • 細胞核內識別:介導可變剪接、RNA成熟、RNA出核
  • 細胞質中識別:介導RNA翻譯、RNA降解、RNA穩定性

 

 

 

5、m6A甲基化的主要研究方向

m6A甲基化目前主要運用在分子機制的理論性研究。

 

 

 

6、m6A甲基化檢測技術工具的選擇

 

 

MeRIP-seq和微量MeRIP-seq用於轉錄組范圍內研究探索,並篩選目標基因。MeRIP-seq技術具有建庫簡單,技術成熟等優勢,微量MeRIP-seq具有建庫簡單,技術成熟,低起始量等優勢。易基因自主研發微量RNA甲基化檢測技術,樣本起始量可降低至10-20μg,最低僅需5μg總RNA。

 

微量MeRIP-seq

 

MeRIP-qPCR需要結合Input的qPCR結果進行分析,應用方向為后續目標基因的甲基化驗證,具有靶基因、准確性更高等優勢。

 

MeRIP-qPCR

 

7、m6A甲基化數據挖掘思路

m6A甲基化數據挖掘主要有三步:

  • m6A甲基化圖譜分析,整體把握m6A甲基化圖譜特征:m6A peak數量變化、m6A修飾基因數量變化、單個基因m6A peak數量分析、m6A peak在基因元件上的分布、m6A peak的motif分析、m6A peak修飾基因的功能分析
  • 差異m6A peak分析,篩選具體差異m6A peak和基因:差異m6A peak鑒定、非時序數據的分析策略、時序數據的分析策略、差異m6A修飾基因的功能分析、差異m6A修飾基因的PPI分析、候選基因的m6A修飾可視化展示
  • 甲基化組學&轉錄組學關聯分析:Meta genes整體關聯、DMG-DEG對應關聯、m6A修飾目標基因的篩選策略

 

 

8、m6A甲基化下游實驗設計

(1)簡單驗證

A. 目標基因m6A甲基化的驗證:MeRIP-RT-PCR

B. 檢測目標基因的mRNA表達水平:RT-qPCR

C. 檢測目標基因蛋白質表達水平:Western blot

 

 

(2)全局m6A甲基化干擾實驗(非靶向),驗證m6A甲基化書否真的影響目標基因表達和細胞功能

A. m6A甲基化干擾:m6A writers/erasers的突變/敲降/敲除/過表達、m6A甲基化抑制劑
如環亮氨酸、m6A去甲基化抑制劑如FTO抑制劑FB23-2

B. 檢測m6A甲基化整體變化:m6A甲基化免疫熒光染色(定性)、m6A斑點雜交(定性)、比色法(定量)、質譜法(定量)

C. 檢測目標基因的m6A甲基化變化:MeRIP-qPCR

D. 檢測目標基因的mRNA水平:RT-qPCR

E. 檢測目標基因蛋白質水平:Western blot

F. 檢測細胞功能/表型變化

 

FB23-2給葯后,大腦損傷組神經功能缺陷評分顯著變差

 

(3)靶向目標基因的甲基化/去甲基化實驗,檢測某區域m6A修飾是否真的影響目標基因的表達

A. 目的基因m6A甲基化干擾細胞系的構建:熒光素酶活性分析實驗(Luciferase activity assay)——構建含甲基化/未甲基化m6A位點的目標基因-熒光素酶表達質粒,轉染細胞並表達。

B. 檢測目標基因的m6A甲基化變化:MeRIP-qPCR

C. 檢測熒光素酶報告基因的mRNA表達水平:RT-qPCR

D. 檢測目標基因蛋白質表達水平:Western blot

E. 檢測細胞功能受到的影響:免疫熒光顯微觀察功能標志物測定... ...

 

用於驗證目標基因上m6A甲基化功能的雙熒光素酶報告系統

 

(4)研究目標基因的m6A甲基化如何影響目標基因表達

A. 檢測m6A是否通過影響目標基因翻譯而影響蛋白質水平:Polysome profiling、Ribo-seq,通過對結合核糖體上的mRNA進行定量,分析目標基因的蛋白翻譯效率

B. 研究m6A是否通過調節mRNA的穩定性和降解而影響目標基因蛋白水平:研究m6A對目標基因mRNA水平的影響——RT-qPCR、RNA-seq

C. 研究m6A是否通過調控RNA的出核(nuclear export)而影響目標基因蛋白水平:裂解細胞,超速離心分離細胞核與細胞質,然后分別進行RT-PCR實驗檢測細胞核與細胞質中的mRNA水平

 

(5)m6A修飾目標基因的表達回復實驗

A. writers的突變/敲降/敲除實驗:RT-PCR檢測目標基因的mRNA水平變化、Western blot檢測目標基因的蛋白水平變化、檢測目標基因的功能

B. writers的突變/敲降/敲除后,目標基因的過表達回復實驗:檢測各項表型指數、細胞增殖、分化的回復情況

 

 

METTL3敲除后,靶基因Ezh2的蛋白表達受到影響。而靶基因Ezh2過表達回復實驗會消除METTL3敲除對細胞增殖分化的不利影響

 

(6)研究特定m6A Readers通過結合目標基因RNA而影響目標基因的蛋白表達

  1. 合理推測結合目標基因的m6A Readers是哪一種
  2. Readers的突變/敲降/敲除/過表達實驗:RT-PCR驗證靶基因的mRNA水平、Western blot驗證靶基因的蛋白水平、Readers的RIP-qPCR驗證Readers蛋白與靶基因mRNA的結合

 

YTHDF1引入突變后,檢測其假定靶基因的表達和與靶基因的結合是否收到影響

 

以上就是易基因關於RNA甲基化研究的相關總結,有RNA甲基化(m5C、m6A)測序需求的老師可以聯系我們哦!

 

 

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